اثر تجویز گنادوتروپین جفتی اسب (ECG) و گنادوتروپین جفتی انسانی (hCG) پس از تلقیح مصنوعی بر باروری گاو های شیری

توجه : به همراه فایل word این محصول فایل پاورپوینت (PowerPoint) و اسلاید های آن به صورت هدیه ارائه خواهد شد

این مقاله، ترجمه شده یک مقاله مرجع و معتبر انگلیسی می باشد که به صورت بسیار عالی توسط متخصصین این رشته ترجمه شده است و به صورت فایل ورد (microsoft word) ارائه می گردد

متن داخلی مقاله بسیار عالی، پر محتوا و قابل درک می باشد و شما از استفاده ی آن بسیار لذت خواهید برد. ما عالی بودن این مقاله را تضمین می کنیم

فایل ورد این مقاله بسیار خوب تایپ شده و قابل کپی و ویرایش می باشد و تنظیمات آن نیز به صورت عالی انجام شده است؛ به همراه فایل ورد این مقاله یک فایل پاور پوینت نیز به شما ارئه خواهد شد که دارای یک قالب بسیار زیبا و تنظیمات نمایشی متعدد می باشد

توجه : در صورت مشاهده بهم ریختگی احتمالی در متون زیر ،دلیل ان کپی کردن این مطالب از داخل فایل می باشد و در فایل اصلی اثر تجویز گنادوتروپین جفتی اسب (ECG) و گنادوتروپین جفتی انسانی (hCG) پس از تلقیح مصنوعی بر باروری گاو های شیری،به هیچ وجه بهم ریختگی وجود ندارد

تعداد صفحات این فایل: ۱۶ صفحه

 اثر متقابل بین تیمار با eCG و نوع AI در ازمایش ۱ نشان داد که اثر سودمند Ecg بر روی میزان ابستنی در TAI گاو بیشتر بود. در این ازمایش، فحلی با استفاده از GnRH و ۷ روز بعد هم زمان بود. گاو های فحل در AI بوده و گاو هایی که فحلی نشان ندادند مقدار دوز دیگر را دریافت کرده و۷۲ بعد از تزریق به صورتTAI بودند. شاید گاو های TAI بیشتر در مرحله فحلی بوده و از این روی فولیکول های کوچک تری داشته و کم تر تشکیل CL دارند و این می تواند ناشی از eCG باشد. به طور مشابه، تجویز Hcg در روز ۵ بعد از تلقیح موجب افزایش نرخ ابستنی در گاو های با نمره بدنی پایین شد. این با یافته های ازمایش ۳ هم خوانی داردکه در آن eCG موجب افزایش نرخ آبستنی شد ولی در گاو هایی با نمره وضعیت بدن این مورد مشهود بود.
چون تجویز آنالوگ گنادو تروپین در اواخر دوره جنینی موچب کاهش سقط جنین در بین روز های ۴۵ و ۹۰ درگاو هایی شد که تشکیل جسم زرد کردند ولی تنها ۵۵ درصد گاو ها به تیمار پاسخ دادند، تصمیم گرفته شده که استفاده از hCG در روز ۲۹ موجب افزایش تشکیل جسم زرد می شود. اثرات متقابل بین eCGدر روز ۲۲ بعد از تلقیح و hCG در روز ۲۹ ابستنی بر سقط چنین بین روز های ۲۹ و ۴۵ مورد انتظار نبود. انتظار داشتیم که hCG موجب تخمگ گذاری یا لوتئالی شدن فولیکول هایی شود که توسط eCG 7 روزقبل تحریک می شوند و از این روی میزان سقط جنین را کاخش می دهد. در حقیقت، در ازمایش ۱، hCG موچب کاهش سقط جنین در گاو هایی شد که قبلا با eCG تیمار شده بودند ولی موجب افزایش سقط جنین در گاو هایی شد که با eCG در روز ۲۲ تیمار نشده بودند. در ازمایش ۲، درصد بالایی از گاو ها بعد از تیمار با hCG در روز ۹ بدون تیمار قبلی با eCG سقط جنین نشان دادند ولی اندازه نمونه برای ارزیابی این پاسخ کافی نبود. اثر بالقوه eCG برون زا و hCG طی فرایند ایمپلنت در گاو را نباید نادیده گرفت. گیرنده LH/hCG در اندومتریوم انسان بیان می شود و hCG قادر به ترشح فاکتور بازدارندگی لوکمی بوده و مانع از تولید اینترلوکین ۶ می کند که نشان دهنده تنظیم ایمنی محلی سلول های اپی تلیال اندومتریوم انسانی است.

عنوان انگلیسی:The effect of administering equine chorionic gonadotropin (eCG) and human chorionic gonadotropin (hCG) post artificial insemination on fertility of lactating dairy cows~~en~~

۱ Introduction Reproductive performance in lactating dairy cows is reduced by late embryonic and early fetal mortality, which average 13% [1] and 11% [2], respectively. Suboptimal concentrations of plasma progesterone in lactating dairy cows [3] is a major cause for impaired embryo development [4] and increased pregnancy losses [5]. In fact, cows with a number of corpora lutea exceeding the number of embryos (additional corpus luteum) were less likely to experience fetal loss [2]. Therefore, induction of accessory corpora lutea that increase progesterone concentrations in plasma [6] or administration of progesterone [7] reduced late embryonic and early fetal mortality. Strategies, such as administration of human chorionic gonadotrophin (hCG) on Day 5 [8] and Day 7 [9] of the estrous cycle in dairy cows, have been used to induce accessory corpora lutea and increase plasma progesterone concentrations. Administration of hCG on Day 5 of the estrous cycle induced a high proportion of accessory corpora lutea (86.2%), elevated progesterone concentrations and specifically increased conception rate in cows with low body condition score [10]. In the late embryonic period, administration of a GnRH agonist (deslorelin) implant [11] at Day 27 after insemination in pregnant cows induced accessory CL only in half of the cows (53.7%), increased plasma progesterone concentrations, and reduced pregnancy losses between Days 45 and 90 of gestation, but only in cows with an accessory CL on Day 45. In non-lactating beef cows, hCG was able to induce replacement CL in the early fetal period after stimulation of follicular growth with FSH and monitoring the size of the follicles by ultrasonography [12]. Follicular growth occurs during early pregnancy, especially in the contralateral ovary to the pregnant horn [13–۱۵]. Administration of low doses of equine chorionic gonadotrophin (eCG) can stimulate follicular growth in lactating dairy cows [16]. Therefore, administration of eCG followed by a treatment with hCG a few days later could be more effective in generating accessory corpora lutea and follicle luteinization that may enhance embryo and fetal survival. The hypothesis of this study was that treatment with eCG and hCG will increase progesterone concentrations and fertility in lactating dairy cows. The objective of Experiment 1 was to evaluate the effect of a treatment with eCG on Day 22 and hCG on Day 29 after AI on fertility. The objective of Experiment 2 was to evaluate eCG and hCG effects on ovarian structures and plasma progesterone concentration. The objective of Experiment 3 was to evaluate only the effect of an eCG treatment on Day 22 after AI on fertility. 2. Materials and methods 2.1. Experiment 1 The experiment was conducted in a dairy herd located in the North East of La Pampa province, Argentina, with 450 Holstein lactating cows during the winter of 2008. Cows were grazing a winter annual pasture (avena sativa) and supplemented with corn silage, alfalfa hay and a grain concentrate formulated to meet or exceed the requirements of lactating dairy cows [17]. Cows were milked twice a day and the rolling herd average was 7625 kg. Reproductive management included a voluntary waiting period of 50 days and a breeding program that combined AI at detected estrus (AIDE) and timed AI (TAI) utilizing the Select Synch and Cosynch protocols, respectively. Cows were treated with GnRH (10
g im; buserelin, Receptal, Intervet, Argentina) and 7 days later were given cloprostenol (0.15 mg im; D-cloprostenol, Enzaprost, Biogenesis, Bago, Argentina; PGF) and AIDE (Select Synch Protocol). Cows that did not show estrus by 72 h after PGF were treated with GnRH and TAI (Cosynch Protocol). Detection of estrus was conducted by visual observation for 45 min during early morning, noon and evening, and overall estrus detection rate for the farm was 60%. The day of AI was considered experimental Day 0. Cows that did not return to estrus by Day 22 (n
۱۶۴) were assigned randomly to receive either eCG (400 IU im; Novormon, Syntex, Argentina, n
۸۰) or remain untreated as controls (n
۸۴). On Day 29, pregnant cows (n
۶۸) were randomly assigned to receive either hCG (2500 IU im; Ovusyn, Syntex, Argentina; n
۳۲), or remain untreated as controls (n
۳۶). Intramuscular administrations of eCG and/or hCG were applied over the rump in all experiments. Pregnancy diagnosis was conducted by ultrasonography on Day 29 [18] and ultrasonography and transrectal palpation of the uterus [19] on Day 45 (Fig. 1). On Day 0, parity, days in milk, and type of AI were recorded. The distribution of cows by parity, days in milk, and type of AI for each treatment are shown (Table 1). Blood samples were collected during the morning milking into vacuum tubes containing sodium heparin (Vacutainer, BD, Franklin Lakes, NJ, USA) by puncture of the median coccygeal vein or artery on Days 29 and 45 in a subset of cows (n
۶۰) that were pregnant on both days. Upon collection, samples were immediately placed on ice, and centrifuged (1100g for 20 min) within 12 h. Plasma was separated and stored at 20°C until assayed. Plasma progesterone concentrations were determined in duplicates by radioimmunoassay using the RIA kit (Diagnostic Products Corporation, Los Angeles, CA) with a sensitivity of 0.1 ng/mL and an intraassay coefficient of variation 9% for samples between 0.1 and 40 ng/mL.

$$en!!